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COSMOSIL Cholester色譜柱

產(chǎn)品簡介

COSMOSIL Cholester色譜柱 是反相體系的HPLC柱,膽甾醇鍵合硅膠填料,具有和傳統(tǒng)的烷基鍵合C18、C30硅膠填料一樣的疏水性,但是在相同的分析條件下,Cholester對疏水化合物的立體選擇性好。

產(chǎn)品型號:
更新時間:2023-11-13
廠商性質(zhì):代理商
訪問量:1285
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產(chǎn)品描述

COSMOSIL Cholester色譜柱是反相體系的HPLC柱,膽甾醇鍵合硅膠填料,具有和傳統(tǒng)的烷基鍵合C18、C30硅膠填料一樣的疏水性,但是在相同的分析條件下,Cholester對疏水化合物的立體選擇性好。

Cholester與C18柱具有相同的疏水性。因此使用Cholester代替C18柱或C30柱時,不需要改變分析條件。與傳統(tǒng)的C18柱相比,Cholester具有更強的選擇性和分離同分異構(gòu)體或結(jié)構(gòu)類似物的能力,它可以很好的代替?zhèn)鹘y(tǒng)C18色譜柱。 

COSMOSIL Cholester色譜柱

· 膽甾醇基固定相

· 使用條件與C18柱相同

· 提高了立體選擇性和幾何異構(gòu)體的分離度

· 適用于天然物的分離

規(guī)格


色譜柱5μm Cholester
內(nèi)徑(mm)2.03.04.6102028
柱長(mm)ALLALLALL20-15025020-100150-250ALL
出廠溶劑乙腈 / 水 = 60 / 40甲醇 / 水 = 70 / 30甲醇 / 水 = 80/ 20甲醇 / 水 = 70 / 30甲醇 / 水 = 80/ 20
沖洗方法
  1. 去除色譜柱內(nèi)的緩沖液,鹽,酸的方法:使用不含緩沖液,鹽,酸的流動相沖洗10-15分鐘。
    例:流動相為甲醇/磷酸緩沖液(20mmol/L) =50/50時,就使用甲醇/水 =50/50沖洗

  2. 沖洗色譜柱內(nèi)附著物的方法,基線不穩(wěn)時的解決方法

  • 樣本不是蛋白質(zhì)時,使用甲醇或四氫呋喃沖洗。

  • 樣品是蛋白質(zhì)時,使用含0.1%三氟·乙酸的50-70%的乙腈/水沖洗

保存方法
  1. 短期(數(shù)日)保存:
    使用不含緩沖液,鹽,酸的流動相沖洗10-15分鐘。保存。
    例:流動相為甲醇/磷酸緩沖液(20mmol/L) =50/50時,就使用甲醇/水 =50/50沖洗

  2. 長期(1個月以上)保存:
    使用后,先用不含酸和鹽的流動相清洗色譜柱,再將流動相置換為乙腈/水=70/30或 甲醇/水=70/30,保存。

pH范圍pH2~pH7.5
最大耐壓20MPa15MPa
溫度范圍最高可耐60度,建議在20~50度下進行分析。
可使用的溶劑

除堿溶液和強酸溶液(pH1.5以下)以外都可以使用。(強堿溶液會使硅膠溶化,強酸溶液會使固定相脫落)
注意點:
溶劑粘度過高會導(dǎo)致壓力上升,請將壓力控制在20Mpa以下。 使用酸性流動相或凝固點高的溶劑后,必須清洗色譜柱。

注意事項
  • 一般情況下緩沖液濃度為0.005~0.02 mol/L即可。

  • 流動相在使用前一定要通過0.5μm以下的濾膜過濾。

  • 蛋白質(zhì)反相模式分析時,請使用大孔徑色譜柱(孔隙直徑300?) COSMOSIL Protein - R(粒徑5μm)。



色譜柱2.5μm Cholester
內(nèi)徑(mm)2.03.0
柱長(mm)ALLALL
出廠溶劑乙腈 / 水 = 50 / 50
沖洗方法
  1. 去除色譜柱內(nèi)的緩沖液,鹽,酸的方法:使用不含緩沖液,鹽,酸的流動相沖洗10-15分鐘。
    例:流動相為甲醇/磷酸緩沖液(20mmol/L) =50/50時,就使用甲醇/水 =50/50沖洗

  2. 沖洗色譜柱內(nèi)附著物的方法,基線不穩(wěn)時的解決方法

  • 樣本不是蛋白質(zhì)時,使用甲醇或四氫呋喃沖洗。

  • 樣品是蛋白質(zhì)時,使用含0.1%三氟·乙酸的50-70%的乙腈/水沖洗

保存方法
  1. 短期(數(shù)日)保存:
    使用不含緩沖液,鹽,酸的流動相沖洗10-15分鐘。保存。
    例:流動相為甲醇/磷酸緩沖液(20mmol/L) =50/50時,就使用甲醇/水 =50/50沖洗

  2. 長期(1個月以上)保存:
    使用后,先用不含酸和鹽的流動相清洗色譜柱,再將流動相置換為乙腈/水=70/30或 甲醇/水=70/30,保存。


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